Development and Characterization of Recombinant Adeno-Associated Virus Displaying mCherry Proteins at their Surface
Clette, Benoit
Promoteur(s) : Di Valentin, Emmanuel ; Neirinckx, Virginie
Date de soutenance : 26-jui-2024 • URL permanente : http://hdl.handle.net/2268.2/20544
Détails
Titre : | Development and Characterization of Recombinant Adeno-Associated Virus Displaying mCherry Proteins at their Surface |
Titre traduit : | [fr] Développement et caractérisation de virus adéno-associés recombinants exposant des protéines mCherry à leur surface |
Auteur : | Clette, Benoit |
Date de soutenance : | 26-jui-2024 |
Promoteur(s) : | Di Valentin, Emmanuel
Neirinckx, Virginie |
Membre(s) du jury : | Sadzot, Catherine
Dumoulin, Mireille Legrand, Sylvie |
Langue : | Anglais |
Nombre de pages : | 62 |
Discipline(s) : | Sciences du vivant > Biochimie, biophysique & biologie moléculaire |
Commentaire : | CONFIDENTIEL |
Organisme(s) subsidiant(s) : | Viral Vector Platform |
Centre(s) de recherche : | GIGA |
Intitulé du projet de recherche : | Development and Characterization of Recombinant Adeno-Associated Virus Displaying mCherry Proteins at their Surface |
Institution(s) : | Université de Liège, Liège, Belgique |
Diplôme : | Master en biochimie et biologie moléculaire et cellulaire, à finalité approfondie |
Faculté : | Mémoires de la Faculté des Sciences |
Résumé
[fr] Le ciblage spécifique des AAV vers un type cellulaire d'intérêt peut ne pas être réalisable avec les
sérotypes naturels d'AAV. L'utilisation de nanocorps (nb) couplés aux AAV représente une technologie
de choix pour surmonter ces obstacles, permettant de moduler plus facilement le tropisme des AAV avec
une grande efficacité, et de développer des thérapies géniques et cellulaires plus efficaces et plus sûres.
Ce ciblage optimisé permet de réduire les effets indésirables liés à la transduction d'autres cellules que
les cellules cibles.
Dans le cadre de notre recherche, nous avons développé et caractérisé des vecteurs viraux recombinants
basés sur les virus adéno-associé (rAAV) qui présentent des protéines mCherry à la surface de leur
capside, avec pour objectif final de remplacer cette protéine fluorescente par un nanobody possédant
une affinité spécifique envers différents récepteurs cellulaires, ce qui pourrait ainsi permettre de rediriger
les rAAV de manière efficace. En nous basant sur divers résultats et informations obtenus dans la
littérature, nous avons réussi à muter des résidus spécifiques de la capside des rAAV impliqués dans la
liaison avec leur récepteur naturel, le protéoglycane sulfate d’héparane (HSPG).
En utilisant un phénotypage de cellules transduites avec nos vecteurs modifiés grâce à la cytométrie en
flux, nous avons confirmé que ces vecteurs rAAV-mCherry montrent une efficacité de transduction
réduite dans les cellules de glioblastome et les cellules LX-1B4, par rapport aux vecteurs rAAV de
sérotype 2. Pour augmenter encore la spécificité et l'efficacité de nos vecteurs, nous avons tenté de cloner
des séquences de nanobodies dans le gène de la capside. Malgré les obstacles rencontrés nous lors de
nos premiers essais de clonage, nous continuons à travailler sur l'établissement d'une méthode robuste
et reproductible pour incorporer les séquences de nanobodies dans le gène codant pour les protéines de
la capside des AAV.
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